Mutageneza ENU la șoareci

Abstract

Progresul secvențierii genomului uman determină abordări genetice pentru definirea funcției genelor. Strategii precum capcanele genetice și mutageneza chimică vor genera în curând o resursă mare de șoareci mutanți. Mutațiile punctiforme induse de N -etil- N -nitrozouree (ENU) oferă o resursă unică de mutanți, deoarece acestea: (i) reflectă consecințele modificării unei singure gene, independent de efectele de poziție; (ii) oferă o disecție a structurii fine a funcției proteice; (iii) prezintă o gamă de efecte mutante, de la pierderea completă sau parțială a funcției până la o funcție exagerată; și (iv) descoperă funcțiile genelor într-o manieră imparțială. Ecranările ENU orientate spre fenotip la șoarece pun accentul pe relevanța pentru bolile clinice umane, vizând cardiologia, fiziologia, neurologia, imunitatea, hematopoieza și dezvoltarea mamiferelor. Astfel de abordări sunt extrem de puternice în înțelegerea bolilor și trăsăturilor umane complexe: modificările perechilor de baze pot modela cu exactitate modificările de baze întâlnite în bolile umane, iar alelele mutante subtile într-un fond genetic standard oferă capacitatea de a analiza consecințele genotipurilor compuse. Experimentele de mutageneză ENU la șoareci, aflate în curs de desfășurare, generează o comoară de noi mutații care permit un studiu aprofundat al unei singure gene, al unei regiuni cromozomiale sau al unui sistem biologic.

Introducere

Instrumentele genetice de manipulare la șoarece sunt extinse și puternice. Geneticienii șoarecilor pot elimina sau supraexprima gene în întregul animal sau într-un țesut specific, pot introduce bucăți mari de ADN propriu sau străin în genom și pot inginera cromozomi întregi. Aceste tehnici, combinate cu asemănările genetice, de dezvoltare, patologice și fiziologice dintre șoarece și om, au făcut din șoarecele de laborator un organism model principal pentru cercetarea bolilor umane. Tulpinile consangvinizate de șoareci oferă posibilitatea de a studia o trăsătură a unei boli într-un fond genetic definit, permițând distincția între fenotipurile conferite de o singură mutație și contribuțiile altor modificatori genetici.

Capacitatea de a crea mutații de pierdere a funcției prin recombinare omologă în celulele stem embrionare a deschis calea unei revoluții în biologia șoarecilor. Cu ajutorul tehnologiei celulelor stem embrionare, orice genă implicată în boli umane poate fi perturbată, oferind informații valoroase despre consecințele mutației la nivelul întregului animal. În timp ce mutațiile nule sunt necesare, mutațiile subtile induse de N -etil- N -nitrozouree (ENU) sunt de neprețuit pentru examinarea întregii game de funcții genetice. Mutațiile în regiunile de codificare și în elementele de reglementare pot produce fenotipuri extrem de diferite, oferind în același timp o disecție fină a structurii funcției proteice și a reglării genelor. Serii de alele pot fi generate prin recombinare omoloagă, dar mutageneza bazată pe fenotipuri oferă multe avantaje în ceea ce privește viteza de generare și eliminarea prejudecăților cercetătorului. Prin urmare, o bază de date knockout pentru genomul șoricelului ar trebui considerată doar ca un punct de plecare; pentru a finaliza analiza funcțională sunt obligatorii alte alele și specificități tisulare.

Mutagenizarea liniei germinale a șoarecilor

ENU poate transfera gruparea sa etilică la radicalii de oxigen sau de azot din ADN, ceea ce are ca rezultat o deteriorare și o substituție a perechilor de baze dacă nu este reparată. Cele mai mari rate de mutație apar în celulele stem spermatogoniale pre-meiotice, cu frecvențe de mutație la un singur locus de 6–1,5 × 10 -3 ( 1-3 ), ceea ce echivalează cu obținerea unei mutații într-o singură genă de elecție la unul din 175-655 de gameți examinați. Datorită puterii sale de a izola mutații în orice genă sau regiune de interes, ENU a fost utilizat la șoarece pentru: (i) obținerea de serii multialelice de gene unice pentru a defini mai bine funcția; (ii) disecarea căilor biochimice sau de dezvoltare; (iii) obținerea de noi mutații recesive pe un singur cromozom sau la nivelul întregului genom; și (iv) saturarea regiunilor din genomul șoricelului care sunt descoperite prin deleții ( 4-10 ). Analiza a 62 de mutații de linie germinală secvențiate din 24 de gene arată că ENU modifică predominant perechile de baze A/T, cu 44 % de tranziții A/T→T/A, 38 % de tranziții A/T→G/C, 8 % de tranziții G/C →A/T, 3 % de tranziții G/C→C/G, 5 % de tranziții A/T→C/G și 2 % de tranziții G/C→T/A ( Tabelul 1 ; Fig. 1 ). Atunci când sunt traduse într-un produs proteic, aceste modificări au ca rezultat 64 % mutații cu sens greșit, 10 % mutații fără sens și 26 % erori de splicing ( Tabelul 1 ; Fig. 1 ).

Deoarece este un mutagen punctiform, ENU poate induce multe tipuri diferite de alele. Mutații de pierdere a funcției, hipomorfe viabile ale grupurilor de completare letală, antimorfe și mutații de câștig de funcție au fost izolate în ecrane de mutageneză la șoareci ( 4 , 9-16 ). Seriile de alele la un singur loci sunt extrem de puternice atunci când sunt analizate împreună pentru a defini funcția. Seriile alelice la loci complecși pot perturba izoforme proteice individuale, ceea ce duce la descoperirea unor funcții distincte în diferite țesuturi de-a lungul vieții unui organism ( 17 ). Un exemplu izbitor al unei astfel de serii alelice este locusul quaking ( qk ). Înainte de izolarea alelelor induse de ENU, locusul quaking a fost definit de o singură alelă spontană, qkV , cu un fenotip homozigot de convulsii și tremurături cauzate de dismielinizarea severă a sistemului nervos central (SNC) ( 18 ). Cu toate acestea, alelele induse de ENU arată că quaking funcționează, de asemenea, în timpul embriogenezei ( 7 , 13 ). Homozigoții a patru dintre cele cinci alele induse de ENU ( qk1-1 , qkkt1 , qkk2 , qkkt3/4 ) mor la zilele embrionare (E) 8,5-10,5 cu defecte ale SNC, în timp ce numai unul dintre ei este viabil și prezintă tremurături și convulsii ( qke5 ) (19; J.K. Noveroske și M.J. Justice, date nepublicate). Deși alelele quaking pot fi grupate pe baza letalității embrionare sau a dismielinizării viabile, fiecare alelă se abate într-un mod semnificativ de la aceste fenotipuri generale, ceea ce o face o resursă unică și valoroasă pentru studii de structură/funcție fină și modelarea defectelor tubului neural uman, precum și a tulburărilor de convulsii și de mielinizare ( Tabelul 2 ). Seriile alelice generate de ENU sau de direcționarea genică la alți loci complecși vor fi instrumente valoroase pentru disecarea funcției proteice ( 17 ).

Tabel 1

Sumarul mutațiilor induse de ENU secvențiate

Tabel 1

Sumarul mutațiilor induse de ENU secvențiate

Tabel 1

Sumarul mutațiilor induse de ENU secvențiate-induse

Figura 1

Mutageneza ENU pentru izolarea mutațiilor. ENU induce leziuni în ADN-ul celulelor stem spermatogoniale de șoarece, afectând în principal perechile de baze AT. Aceste leziuni sunt prezente în spermatozoizii masculi și, după izolarea lor prin cribluri genetice și fenotipice, dau naștere la o varietate de mutații fenotipice. Produsele proteice mutante sunt în principal mutații de tip missense, o clasă valoroasă de mutații pentru disecția structurii și funcției proteinelor. Mutageneza la șoarece va pune accentul pe modelarea bolilor umane prin teste bazate pe fenotipuri.

Figura 1

Mutageneza ENU pentru izolarea mutațiilor. ENU induce leziuni în ADN-ul celulelor stem spermatogoniale de șoarece, afectând în principal perechile de baze AT. Aceste leziuni sunt prezente în spermatozoizii masculi și, după izolarea lor prin cribluri genetice și fenotipice, dau naștere la o varietate de mutații fenotipice. Produsele proteice mutante sunt în principal mutații de tip missense, o clasă valoroasă de mutații pentru disecția structurii și funcției proteinelor. Mutageneza la șoarece va pune accentul pe modelarea bolilor umane prin intermediul testelor bazate pe fenotipuri.

Isolarea modelelor de boli cu ajutorul ENU

Pentru izolarea mutațiilor induse de ENU se pot folosi diferite ecrane genetice. Un ecran cu o singură generație poate genera rapid mutanți viabili și fertili care reprezintă serii de alele, modificatori sau mutații dominante. Ecranele de deleție pe două generații pot identifica mutații letale recesive într-o regiune definită a genomului. Screen-urile pedigree cu trei generații pot fi utilizate pentru a scana întregul genom în căutarea unei mutații viabile de interes sau, în combinație cu markeri legați sau cromozomi de echilibrare, pentru a izola alele letale sau sterile (a se vedea mai jos).

Screen-uri la scară largă

Mai multe screen-uri de mutageneză la scară largă au fost deja finanțate la nivel internațional. Caracteristicile cheie ale acestor ecrane sunt rezumate în tabelul 3 . Fiecare dintre aceste ecrane utilizează o strategie genetică diferită pentru a izola mutațiile: unele ecrane vizează mutații dominante, în timp ce altele sunt concepute pentru a izola mutații recesive. Unele grupuri selectează mutații recesive letale și dăunătoare prin mutageneză regională pentru a aborda funcția genică în paralel cu Proiectul Genomului uman. Alte grupuri scanează un număr mare de genomuri mutagenetizate pentru a căuta variante dominante neurologice și de hematologie clinică sau biochimice.

Screening la scară mică

Screeningul pentru mutații nu trebuie să fie efectuat pe scară largă. Două strategii eficiente din punct de vedere al costurilor pentru laboratoarele mici sunt seriile alelice și ecranările de căi sensibilizate. Un screening al căilor sensibilizate vizează o singură cale biologică sau biochimică și exploatează necomplementarea non-alelică pentru a izola mutațiile în prima generație de descendenți ai masculilor mutagenați. Într-un astfel de screening, o mutație indusă (*) la un locus care interacționează cu locusul de interes ( m ) poate să nu se completeze (*/+;+/ m ), dar să producă un fenotip care amintește de mutantul homozigot original ( m/m ). Unele ecrane sensibilizate pot fi efectuate în contextul unui medicament sau al unei modificări de mediu, în loc de o modificare genetică. De exemplu, folosind o injecție de fenilalanină ca sensibilizator, au fost izolate ca heterozigoți o serie de mutații care afectează calea metabolismului fenilalaninei ( 20 , 21 ).

Combinarea abordărilor bazate pe gene și pe fenotip

O abordare unică în vederea izolării mutațiilor combină direcționarea bazată pe gene în celulele stem embrionare cu mutageneza ENU bazată pe fenotip. Strategiile genetice puternice la Drosophila se bazează pe disponibilitatea reactivilor genetici, cum ar fi delețiile, duplicațiile și inversiunile, pentru a facilita ecranările genetice și pentru a asigura o întreținere simplă și rentabilă a stocurilor. Delețiile sunt utile pentru generarea haploidiei în ecranele genetice, precum și pentru cartografierea cu ajutorul strategiilor de necomplementare ( Fig. 2 B) ( 22 ). Inversiunile care poartă un marker dominant și sunt homozigote letale sunt cromozomi de echilibrare ideali pentru a suprima recombinarea și pentru a identifica cu ușurință clase de descendenți pentru izolarea și menținerea mutațiilor letale sau dăunătoare ( Fig. 2 C). Capacitatea de a proiecta regiuni cromozomiale întregi cu ajutorul tehnologiilor Cre /loxP permite crearea acestor reactivi genetici într-un proces de direcționare genetică în două etape ( Fig. 2 A) ( 23 , 24 ). Abordarea se bazează pe gene, deoarece punctele finale ale deleției sau inversiunii sunt cunoscute, ceea ce reduce la minimum efortul necesar pentru caracterizarea rearanjamentelor. Tehnicile de inginerie permit ca rearanjamentele să fie marcate cu un marker dominant de culoare galbenă a hainei, K-14 agouti , oferind o resursă pentru o cartografiere simplă, pentru întreținerea stocului de animale și pentru testele genetice ( 22 , 24 , 25 ). Crearea de biblioteci genomice de șoareci care conțin construcțiile necesare pentru evenimentele de direcționare oferă un sistem rapid pentru generarea acestora oriunde în genomul șoricelului ( Fig. 2 A) ( 25 ).

Tabel 2

Caracteristicile unice ale alelelor quaking

Tabel 2

Caracteristicile unice ale alelelor quaking

Tabel 3

Fondate pe scară largă.scale ENU screens

Tabel 3

Funded large-scale ENU screens

Un efort inițial de mutageneză, conceput pentru a izola mutații recesive din mai multe clase fenotipice, vizează cromozomul 11 al șoarecilor, care este un cromozom bogat în gene foarte conservat cu cromozomul 17 uman. Scopul este de a satura cromozomul cu mutații pentru a defini funcția genei, apoi de a folosi conservarea legăturilor între șoarece și om pentru a prezice funcția genei la om. Cu ajutorul reactivilor genetici generați de ingineria Cre /loxP, se realizează două scheme de mutageneză: pedigree de deleție pe două generații ( Fig. 2 B) și pedigree pe trei generații folosind cromozomi de echilibrare ( Fig. 2 C). Ambele scheme profită de culoarea galbenă a blănii conferită de transgenul K14-agouti. Schema de deleție poate fi utilizată numai pentru deleții mari care nu sunt dăunătoare pentru animal, limitând screening-ul la anumite regiuni, dar permițând izolarea mutațiilor în numai două generații. Schema de inversiune permite depistarea mutațiilor pe o porțiune mai mare de cromozom, dar necesită trei generații de reproducere.

Identificarea mutațiilor punctiforme

Pentru a fi valoroase, noile mutații trebuie să fie localizate, astfel încât să poată fi identificate genele candidate și modelele de boli umane relevante. Mutațiile punctiforme izolate prin fenotipul lor trebuie să fie cartografiate folosind informații despre fenotip, deoarece nu este disponibilă o etichetă moleculară. În mod tradițional, aceste mutații sunt cartografiate în retrocrucișări meiotice care segregă fenotipul în raport cu polimorfisme moleculare multiple (pentru o analiză, a se vedea ref. 26 ). Pentru a cartografia la o rezoluție de 10 cM este necesară analizarea a 100 de meioze. Astfel, 100 de noi mutații izolate la nivel de genom ar necesita analiza a 10 000 de șoareci. Strategiile de cartografiere de înaltă rezoluție pentru clonarea pozițională implică, de obicei, analiza a 1 000-2000 de meioe pentru fiecare mutație. O multitudine de mutații dominante și recesive pot fi izolate în orice screening ENU, ceea ce face ca cartografierea să fie gâtul de gâtul procesului și necesită tehnologii de cartografiere mai simple, cum ar fi gruparea ADN-ului ( 27 ). Ecranele cu marcare a culorii hainei descrise mai sus sunt unice prin faptul că mutația este izolată legată de markeri cromozomiali vizibili, astfel încât locația cromozomială a acesteia este cunoscută în momentul izolării, eliminând nevoia de cartografiere meiotică. În plus, delețiile generate de Cre /loxP pot fi utilizate pentru a localiza mutațiile într-o regiune subcromosomală prin necomplementare ( 22 , 28 ). Deoarece secvența genomului de șoarece va fi disponibilă în curând, multe mutații vor fi atribuite genelor pe baza candidaturii poziționale după localizarea lor. În plus, complementarea BAC poate fi utilizată pentru a identifica corelațiile mutație-gena ( 29 ).

Figura 2

( A ) Generarea de rearanjamente cromozomiale utilizând Cre /loxP . Au fost construite două biblioteci genomice de șoareci lambda care conțin markerii selectabili necesari pentru evenimente de direcționare în două etape. Una conține markerul selectabil neomicină ( Neo ), capătul 5′ al hipoxantinei fosforibosiltransferazei ( Hprt ), un situs loxP și minigena tirozinazei ( Ty ). Cea de-a doua bibliotecă conține markerul selectabil puromicină ( Puro ), capătul 3′ al Hpr , un site loxP și transgenul K14-Agouti ( Ag ). În cazul în care situsurile loxP sunt inserate în cis în aceeași orientare, recombinarea după transfecția Cre va produce o deleție și celule ES rezistente la HAT, sensibile la Puro, sensibile la Neo. În cazul în care situsurile loxP sunt inserate în orientare opusă, recombinarea după transfecția Cre va produce o inversiune, cu celule ES rezistente la HAT, rezistente la Puro, rezistente la Neo. (B și C) Scheme de mutageneză pentru cromozomul 11 de șoarece folosind rearanjamente cromozomiale marcate cu culoarea galbenă a hainei. Deleția sau inversiunea este marcată cu un marker dominant de culoare galbenă a hainei, K-14-agouti (galben). Fiecare schemă utilizează mutația dominantă Rex ( Re , și indicată de cromozomul negru) pe cromozomul 11, care provoacă o blană cretă (pestriță). În fiecare schemă, masculii de tip sălbatic (C57BL/6J, negru) sunt injectați cu o doză de ENU de 3 × 100 mg/kg. (B) Schema de deleție. După ce și-au recăpătat fertilitatea, masculii tratați cu ENU sunt împerecheați cu femele homozigote Re/Re. Mutația Re marchează cromozomul nemutagenizat, cu mențiunea că poate avea loc o recombinare între o nouă mutație legată și Re . Animalele G1, heterozigote pentru cromozomii mutagenați cu ENU și Re sunt împerecheate cu șoareci hemizigoți pentru o deleție marcată în galben. Clasele de descendenți rezultate pot fi identificate cu ușurință: (i) clasa mutantă este galbenă ș i cu părul drept ș i, în cazul în care lipseș te, indică probabilitatea unei mutații letale; (ii) o clasă purtătoare care este de tip sălbatic ș i care poate fi utilizată pentru a recupera orice mutație letală; (iii) două clase de ș oareci cu părul creț (negru ș i galben) care sunt neinformative ș i pot fi eliminate imediat. ( C ) Schema de inversiune. Cromozomul de echilibrare conține o inversiune care suprimă recombinarea pe un interval rezonabil, 20-30 cM, este marcat cu transgenul dominant K14-agouti care conferă culoarea galbenă a blănii și este homozigot letal din cauza întreruperii uneia sau mai multor gene letale la capetele sale. După ce și-au recăpătat fertilitatea, masculii tratați cu ENU sunt împerecheați cu femele purtătoare ale cromozomului de echilibrare (galben). Animalele G1 care sunt galbene sunt împerecheate cu animale heterozigote pentru cromozomul de echilibrare și Re (galben pestriț). În a doua generație pot fi identificate trei clase de descendenți, iar cea de-a patra clasă, care este homozigotă pentru cromozomul de echilibrare, moare (cu susul în jos). Animalele G2 utile sunt cele galbene, cu părul drept, care sunt împerecheate frate-soră. Descendenții G3 sunt ușor de clasificat ca: (i) clasa mutantă de tip sălbatic, care, dacă lipsește, indică probabilitatea unei mutații letale legate și (ii) o clasă purtătoare folosită pentru a salva orice mutație letală, care poartă mutația punctiformă echilibrată, ideală pentru menținerea stocului.

Figura 2

( A ) Generarea de rearanjamente cromozomiale folosind Cre /loxP . Au fost construite două biblioteci genomice de șoareci lambda care conțin markerii selectibili necesari pentru evenimente de direcționare în două etape. Una conține markerul selectabil neomicină ( Neo ), capătul 5′ al hipoxantinei fosforibosiltransferazei ( Hprt ), un situs loxP și minigena tirozinazei ( Ty ). Cea de-a doua bibliotecă conține markerul selectabil puromicină ( Puro ), capătul 3′ al Hpr , un site loxP și transgenul K14-Agouti ( Ag ). În cazul în care site-urile loxP sunt inserate în cis în aceeași orientare, recombinarea după transfecția Cre va produce o deleție și celule ES rezistente la HAT, sensibile la Puro, sensibile la Neo. În cazul în care situsurile loxP sunt inserate în orientare opusă, recombinarea după transfecția Cre va produce o inversiune, cu celule ES rezistente la HAT, rezistente la Puro, rezistente la Neo. (B și C) Scheme de mutageneză pentru cromozomul 11 de șoarece folosind rearanjamente cromozomiale marcate cu culoarea galbenă a hainei. Deleția sau inversiunea este marcată cu un marker dominant de culoare galbenă a hainei, K-14-agouti (galben). Fiecare schemă utilizează mutația dominantă Rex ( Re , și indicată de cromozomul negru) pe cromozomul 11, care provoacă o blană cretă (pestriță). În fiecare schemă, masculii de tip sălbatic (C57BL/6J, negru) sunt injectați cu o doză de ENU de 3 × 100 mg/kg. (B) Schema de deleție. După ce și-au recăpătat fertilitatea, masculii tratați cu ENU sunt împerecheați cu femele homozigote Re/Re. Mutația Re marchează cromozomul nemutagenizat, cu mențiunea că poate avea loc o recombinare între o nouă mutație legată și Re . Animalele G1, heterozigote pentru cromozomii mutagenați cu ENU și Re sunt împerecheate cu șoareci hemizigoți pentru o deleție cu marcaj galben. Clasele de descendenți rezultate pot fi identificate cu ușurință: (i) clasa mutantă este galbenă ș i cu părul drept ș i, în cazul în care lipseș te, indică probabilitatea unei mutații letale; (ii) o clasă purtătoare care este de tip sălbatic ș i care poate fi utilizată pentru a recupera orice mutație letală; (iii) două clase de ș oareci cu părul creț (negru ș i galben) care sunt neinformative ș i pot fi eliminate imediat. ( C ) Schema de inversiune. Cromozomul de echilibrare conține o inversiune care suprimă recombinarea pe un interval rezonabil, 20-30 cM, este marcat cu transgenul dominant K14-agouti care conferă culoarea galbenă a blănii și este homozigot letal din cauza întreruperii uneia sau mai multor gene letale la capetele sale. După ce și-au recăpătat fertilitatea, masculii tratați cu ENU sunt împerecheați cu femele purtătoare ale cromozomului de echilibrare (galben). Animalele G1 care sunt galbene sunt împerecheate cu animale heterozigote pentru cromozomul de echilibrare și Re (galben pestriț). În a doua generație pot fi identificate trei clase de descendenți, iar cea de-a patra clasă, care este homozigotă pentru cromozomul de echilibrare, moare (cu susul în jos). Animalele G2 utile sunt cele galbene, cu părul drept, care sunt împerecheate frate-soră. Descendenții G3 sunt ușor de clasificat ca: (i) clasa mutantă de tip sălbatic, care, dacă lipsește, indică probabilitatea unei mutații letale legate și (ii) o clasă purtătoare folosită pentru a salva orice mutație letală, care poartă mutația punctiformă echilibrată, ideală pentru menținerea stocului.

Pe măsură ce se dezvoltă noi tehnologii de detectare a polimorfismelor de un singur nucleotid cu randament ridicat, tehnologiile de detectare a mutațiilor punctiforme vor deveni mai simple ( 30 , 31 ). Spre deosebire de oameni, polimorfismele care apar în mod natural sunt rare la tulpinile consangvinizate de șoareci, în special în cadrul regiunilor de codificare. Astfel, detectarea mutațiilor punctuale este posibilă într-un fond de tulpini consangvinizate, ceea ce face ca detectarea mutațiilor cu ajutorul enzimelor de reparare a nepotrivirii să fie o abordare potențială pentru cartografierea și identificarea rapidă a leziunilor.

Cercetarea fenotipurilor de boală

În orice depistare a mutațiilor cu ajutorul ENU, izolarea mutațiilor se bazează pe testarea fenotipului, necesitând ca fenotipul mutantului să varieze semnificativ față de fondul de bază. Cu toate acestea, depistarea mutațiilor implică analiza a numeroase animale, astfel încât testele de depistare a fenotipurilor trebuie să fie largi și ieftine. Fenotipurile vizibile care afectează ochiul, blana, dimensiunea sau comportamentul neurologic sunt ușor de identificat, iar astfel de teste permit adesea obținerea de mutații noi. Comportamentul ș i fenotipurile organelor senzoriale pot fi depistate cu ajutorul testelor standard pentru reflexe, pierderea vederii sau a auzului, dezvoltarea motorie, echilibru ș i coordonare, precum ș i învățare ș i memorie. Dezvoltarea scheletului și morfologia țesuturilor moi pot fi examinate cu ajutorul analizei cu raze X de înaltă rezoluție și cu energie redusă. Testele clinice efectuate pe sângele de șoarece pot produce o gamă largă de fenotipuri relevante pentru bolile clinice umane, chiar dacă testele efectuate pe fluidele corporale ale șoarecilor trebuie să fie efectuate la o scară microscopică. Datorită testelor existente la scară microscopică pentru sugari umani, multe teste clinice sunt deja disponibile. O hemogramă completă cu analiză diferențială microscopică poate identifica anomalii în numărul sau morfologia globulelor roșii și albe, precum și anomalii ale trombocitelor. Extinderea analizei celulelor sanguine cu ajutorul citometriei de flux poate descoperi alte defecte imunologice. Cuantificarea anticorpilor antinucleari poate detecta autoanticorpii serici într-o mare varietate de tulburări autoimune, inclusiv lupusul eritematos sistemic. Testele de chimie clinică pot diagnostica multiple anomalii ale sistemelor de organe, inclusiv afecțiuni hepatice, pancreatice, cardiace și renale. Analiza de urină la șoareci relevă niveluri crescute de proteine sau alte subproduse anormale ale bolii. Spectrometria de masă în tandem poate detecta o varietate de tulburări metabolice care afectează lipidele, acizii grași sau aminoacizii. Sunt în curs de dezvoltare teste suplimentare pentru identificarea fenotipurilor neurologice, cardiovasculare, hematopoietice și imune, utilizând tehnologii de mare randament, cum ar fi microarrays.

Figura 3

O resursă de șoareci mutanți. Inițial, o resursă de șoareci mutanți de la Baylor College of Medicine va fi dezvoltată pentru cromozomul 11 al șoarecilor și este utilizată aici ca o demonstrație a tipurilor de resurse genetice care vor fi disponibile la șoarece. În mod ideal, astfel de resurse vor fi dezvoltate pentru alți cromozomi de șoarece. Resursa de mutanți va consta într-o varietate de mutații, inclusiv mutații punctiforme induse de ENU, întreruperi și inserții de gene țintite, precum și reactivi genetici, cum ar fi deleții și inversiuni. Aceste mutații vor constitui o hartă funcțională a cromozomului și vor fi localizate în intervale moleculare, astfel încât să poată fi ancorate la harta fizică formată din contigii BAC și YAC. Atunci când genomul șoricelului este secvențiat, mutațiile pot fi corelate cu genele candidate care se află în intervalele moleculare.

Figura 3

O resursă de șoareci mutanți. Inițial, o resursă de șoareci mutanți de la Baylor College of Medicine va fi dezvoltată pentru cromozomul 11 al șoarecilor și este utilizată aici ca o demonstrație a tipurilor de resurse genetice care vor fi disponibile la șoarece. În mod ideal, astfel de resurse vor fi dezvoltate pentru alți cromozomi de șoarece. Resursa de mutanți va consta într-o varietate de mutații, inclusiv mutații punctiforme induse de ENU, întreruperi și inserții de gene țintite, precum și reactivi genetici, cum ar fi deleții și inversiuni. Aceste mutații vor constitui o hartă funcțională a cromozomului și vor fi localizate în intervale moleculare, astfel încât să poată fi ancorate la harta fizică formată din contigii BAC și YAC. Atunci când genomul șoricelului este secvențiat, mutațiile pot fi corelate cu genele candidate care se află în intervalele moleculare.

Generarea de resurse pentru șoareci mutanți

Generarea unui număr mare de mutații va crea noi probleme etice și științifice în cadrul comunității de șoareci: vor fi necesare noi baze de date și teste fenotipice, va deveni esențială recuperarea rentabilă a mutațiilor din sperma crioconservată sau liofilizată și vor apărea probleme legate de îngrijirea animalelor și de costuri. Aceste eforturi necesită o investiție enormă în resursele de șoareci.

Resurse genetice

Una dintre cele mai puternice resurse genetice disponibile în prezent la șoarece sunt tulpinile consangvinizate. Definirea în continuare a diversității genetice în aceste tulpini este una dintre prioritățile comunității de șoareci, fiind în curs de desfășurare eforturi pentru dezvoltarea unei baze de date cu caracteristicile tulpinilor. Acest lucru necesită analizarea tulpinilor consangvinizate pentru mulți parametri fenotipici, inclusiv hematologie și chimie clinică, patologie, comportament și fiziologie.

Menținerea, analiza și cartografierea unui număr mare de mutații la șoareci va necesita generarea de resurse genetice pentru a reduce costurile și a diminua erorile. Reactivi genetici, cum ar fi delețiile, sunt în curs de dezvoltare printr-o varietate de metode, inclusiv Cre/ loxP și radiații ( 22 , 23 , 23 , 25 , 32 , 33 ). În prezent, cromozomii de echilibrare pot fi generați rapid și eficient cu ajutorul abordărilor Cre /loxP ( 24 , 25 ). Șoarecii transgenici care conțin YAC-uri sau BAC-uri umane pot fi utili în studiile de completare și salvare ( 34 ). Deoarece fenotipurile mutante pot varia pe diferite medii de tulpini consangvinizate, reactivii genetici ar trebui, de asemenea, să fie menținuți pe medii genetice standard.

Arhivare

Generarea unui număr mare de stocuri de șoareci necesită o arhivare și o reconstituire eficientă a stocurilor. Stocarea embrionilor de șoarece prin crioconservare este o tehnică eficientă care este deja utilizată de peste un deceniu. Recent, succesele înregistrate în crioconservarea spermatozoizilor au făcut din aceasta o tehnică accesibilă ( 35-37 ). În special, sperma de șoarece poate fi utilizată pentru reconstituirea stocurilor prin mai multe tehnologii de reproducere asistată: inseminare artificială, fertilizare in vitro și injecție intracitoplasmatică de spermă (ICSI) ( 38 ). Reconstituirea cu succes a tulpinilor de șoareci din spermă liofilizată cu ajutorul ICSI poate oferi o altă metodă de arhivare și revitalizare a tulpinilor de șoareci ( 39 ).

Baze de date

Bazele de date sunt deja necesare pentru manipularea datelor genetice și fenotipice ale șoarecilor. Principala bază de date pentru șoareci este baza de date a genomului de șoarece găzduită la Jackson Laboratory (Bar Harbor, ME; http://www.informatics.jax.org ), care include un catalog al locusurilor de șoarece care descrie mutanții de șoarece existenți și care conține numeroase informații cartografice care descriu locațiile acestora. Pentru a simplifica căutarea șoarecilor mutanți, a fost dezvoltată recent International Mouse Strain Resource ( 40 ), care este oglindită pe două site-uri web: Jackson Laboratory la www.jax.org/pub-cgi/imsrlist și MRC, Harwell, la imsr.har.mrc.ac.uk/. În plus, este probabil să se acumuleze cantități mari de date fenotipice pentru un număr mare de tulpini de șoareci mutanți, ceea ce creează nevoia de baze de date fenotipice care să poată fi conectate cu bazele de date de cartografiere și de mutageneză.

Distribuție

Pentru a oferi o resursă genetică comunității, șoarecii mutanți trebuie să fie ușor disponibili. Deși multe stocuri de mutanți sunt disponibile de la vânzători comerciali sau de la Jackson Laboratory, sunt necesare centre de distribuție suplimentare. Pentru a satisface această cerere, mai multe centre de resurse pentru șoareci mutanți, finanțate de NIH, vor servi ca arhive de stocuri și centre de distribuție pentru diferitele regiuni din SUA. Arhiva europeană de șoareci mutanți cu noduri la Monteretondo (Roma, Italia), CNRS (Orleans, Franța), Institutul Gulbenkian (Lisabona, Portugalia) și Institutul Karolinska (Huddings, Suedia) reprezintă o resursă pentru eforturile europene. Aceste centre de resurse sunt concepute pentru a distribui toate tipurile de tulpini de șoareci mutanți.

Viitorul se anunță luminos

În următorul deceniu va fi generat un număr mare de stocuri de șoareci mutanți care vor include șoareci purtători de deleții, duplicații, cromozomi de echilibrare, disrupții țintite, capcane genetice, inserții retrovirale sau transgenice și mutații punctiforme. Compilarea acestor mutații într-o resursă de șoareci mutanți va necesita rafinarea localizării lor pe hartă la șoarece și prezicerea localizării lor la om. Mutațiile vor genera o hartă funcțională a genomului care poate fi corelată cu harta secvențelor și a transcripțiilor pentru a oferi o resursă bogată de informații funcționale ( Fig. 3 ). A fost deja produs un număr mare de mutații induse de ENU, care reprezintă doar o fracțiune din potențialul mutațional al genomului mamiferelor, iar experimentele suplimentare vor genera noi modele de boli umane și vor dezvălui noi căi de dezvoltare a mamiferelor. Viziunea noastră asupra funcției genelor la mamifere va fi schimbată în mod dramatic și permanent de aceste experimente, ceea ce va avea un mare impact asupra dezvoltării medicamentelor și a sănătății umane.

Recunoștințe

Autorii îi mulțumesc lui Yin-Chai Cheah pentru asistență în finalizarea manuscrisului. Lucrarea Chromosome 11 este finanțată prin grantul P01 CA75719 al Departamentului de Sănătate Publică al SUA. A.B. este cercetător al Institutului Medical Howard Hughes.

1

Hitotsumachi
S.

,

Carpenter
D.A.

,

Russell
W.L.

.

Repetiția dozei crește eficacitatea mutagenă a N -etil -N -nitrozurei în spermatogoniile de șoarece

,

Proc. Natl Acad. Sci. USA

,

1985

, vol.

82

(pg.

6619

6621

)

2

Shedlovsky
A.

,

McDonald
J.D.

,

Symula
D.

,

Dove
W.F.

.

Modeluri de șoareci de fenilcetonurie umană

,

Genetica

,

1993

, vol.

134

(pag.

1205

1210

)

3

Hong
H.-.K.

,

Noveroske
J.

,

Justiție
M.

,

Chakravarti
A.

.

Factorul de transcripție winged-helix este mutant la șoarecii șateni

,

Nature Genet.

,

1999
în presă

4

Bode
V.C.

.

Mutageneza cu etilnitrozuree și izolarea alelelor mutante pentru gene specifice localizate în regiunea T a cromozomului 17 al șoarecelui

,

Genetica

,

1984

, vol. I, nr. 1.

108

(pg.

457

470

)

5

Justiție
M.J.

,

Bode
V.C.

.

Inducția de noi mutații într-un haplotip t de șoarece folosind mutageneza cu etilnitrozouree

,

Genet. Res.

,

1986

, vol.

47

(pag.

187

192

)

6

Shedlovsky
A.

,

Guenet
J.-.L.

,

Johnson
L.L.

,

Dove
W.F.

.

Inducerea de mutații letale recesive în regiunea T/t-H-2 a genomului de șoarece de către un mutagen punctiform

,

Genet. Res.

,

1986

, vol.

47

(pg.

135

142

)

7

Shedlovsky
A.

,

King
T.R.

,

Dove
W.F.

.

Mutageneză germinală de saturație a liniei germinale a regiunii t murine incluzând o alelă letală la nivelul locusului quaking

,

Proc. Natl Acad. Sci. USA

,

1988

, vol.

85

(pg.

180

184

)

8

Kasarkis
A.

,

Manova
K.

,

Anderson
K.V.

.

A phenotype-based screen for embryonic letal mutations in the mouse

,

Proc. Natl Acad. Sci. USA

,

1998

, vol.

95

(pg.

7485

7490

)

9

Rinchik
E.M.

,

Carpenter
D.A.

,

Handel
M.A.

.

Pleiotropia în sindroamele de microdeleție: anomaliile neurologice și spermatogenice la șoarecii homozigoți pentru deleția p6H se datorează probabil disfuncției unei singure gene

,

Genetica

,

1995

, vol. I, nr. 1, Ed.

92

(pg.

6394

6398

)

10

Rinchik
E.M.

,

Cărpinița
D.A.

.

N-etil-N-nitrozourea mutagenesis of a 6- to 11-cM subregion ofthe Fah-Hbb interval ofthe mouse chromosome 7: completed testing of 4, 557 gametes and deletion mapping and complementation analysis of 31 mutations

,

Genetics

,

1999

, vol.

152

(pag.

373

383

)

11

Ebersole
T.A.

,

Chen
Q.

,

Justiție
M.J.

,

Artzt
K.

.

Produsul genei Quaking, necesar în embriogeneză și mielinizare, combină caracteristici ale proteinelor de legare a ARN-ului și de transducție a semnalului

,

Nature Genet.

,

1996

, vol. I, nr. 1, Ed.

12

(pg.

260

265

)

12

Gibson

F.

,

Walsh
J.

,

Mburu
P.

,

Varela
A.

,

Brown
K.A.

,

Antonio
M.

,

Beisel
K.W.

,

Steel
K.P.

,

Brown
S.D.M.

.

O miozină de tip VII codificată de gena surdității de șoarece shaker-1

,

Nature

,

1995

, vol.

374

(pag.

62

64

)

13

Justiție
M.J.

,

Bode
V.C.

.

Trei alele induse de ENU ale locusului quaking murin sunt mutații letale embrionare recesive

,

Genet. Res.

,

1988

, vol.

51

(pg.

95

102

)

14

Peters
J.

,

Andrews
S.J.

,

Loutit
J.F.

,

Glegg
J.B.

.

Un mutant de β-globină de șoarece care este un model exact al hemoglobinei Rainier la om

,

Genetica

,

1985

, vol.

110

(pag.

709

721

)

15

Vitaterna
M.H.

,

Regele
D.P.

,

Chang
A.M.

,

Kornhauser
J.M.

,

Lowrey
P.L.

,

McDonald
J.D.

,

Dove
W.F.

,

Pinto
L.H.

,

Turek
F.W.

,

Takahashi
J.S.

.

Mutagenesis and mapping ofa mouse gene, Clock, essential for circadian behavior

,

Science

,

1994

, vol.

264

(pag.

719

725

)

16

Schumacher
A.

,

Faust
C.

,

Magnuson
T.

.

Clonarea pozițională a unui regulator global al patterning-ului antero-posterior la șoareci

,

Nature

,

1996

, vol.

383

(pag.

250

253

)

17

Davis
A.P.

,

Justice
M.J.

.

Alelele de șoarece: dacă ai văzut una, nu le-ai văzut pe toate

,

Trends Genet.

,

1998

, vol.

14

(pag.

438

441

)

18

Sidman
R.L.

,

Dickie
M.M.

,

Appel
S.H.

.

Șoareci mutanți (Quaking și Jimpy) cu mielinizare deficitară în sistemul nervos central

,

Science

,

1964

, vol.

144

(pag.

309

311

)

19

Cox
R.D.

,

Hugill
A.

,

Shedlovsky
A.

,

Noveroske
J.K.

,

Best
S.

,

Justiție
M.J.

,

Lehrach
H.

,

Dove
W.F.

.

Efectele contrastante ale mutațiilor letale embrionare induse de ENU asupra genei quaking

,

Genomics

,

1998

, vol. I, nr. 1.

57

(pg.

333

341

)

20

McDonald
J.D.

,

Bode
V.C.

,

Dove
W.F.

,

Shedlovsky
A.

.

Pah hph5 : un mutant de șoarece cu deficiență de fenilalanină hidroxilază

,

Proc. Natl Acad. Sci. USA

,

1990

, vol.

87

(pg.

1965

1967

)

21

Symula
D.J.

,

Shedlovsky
A.

,

Guillery
E.N.

,

Dove
W.F.

.

Un model de șoarece candidat pentru tulburarea Hartnup cu deficiență în transportul aminoacizilor neutri

,

Mamm. Genome

,

1997

, vol.

8

(pg.

102

107

)

22

Justiție
M.J.

,

Zheng
B.

,

Woychik
R.P.

,

Bradley
A.

.

Using targeted large deletions and high-efficiency N -ethyl -N -nitrosourea mutagenesis for functional analyses ofthe mammalian genome

,

Methods

,

1997

, vol.

13

(pag.

423

436

)

23

Ramirez-Solis
R.

,

Liu
P.

,

Bradley
A.

.

Chromosome engineering in mice

,

Nature

,

1995

, vol.

378

(pag.

720

724

)

24

Zheng
B.

,

Sage
M.

,

Cai
W.W.

,

Thompson
D.M.

,

Tavsanli
B.C.

,

Cheah
Y.C.

,

Bradley
A.

.

Engineering a balancer chromosome in the mouse

,

Nature Genet.

,

1999

, vol.

22

(pag.

375

378

)

25

Zheng
B.

,

Mills
A.A.

,

Bradley
A.

.

A system for rapid generation of coat color-tagged knockouts and defined chromosomal rearrangements in mice

,

Nucleic Acids Res.

,

1999

, vol.

27

(pag.

2354

2360

)

26

Copeland
N.G.

,

Jenkins
N.A.

,

Gilbert
D.J.

,

Eppig
J.T.

,

Maltais
L.J.

,

Miller
J.C.

,

Dietrich
W.F.

,

Weaver
A.

,

Lincoln
S.E.

,

Steen
R.G.

,

Stein
L.D.

,

Nadeau
J.H.

,

Lander
E.S.

.

A genetic linkage map of the mouse: current applications and future prospects

,

Science

,

1993

, vol.

262

(pag.

57

66

)

27

Taylor
B.A.

,

Navin
A.

,

Phillips
S.J.

.

PCR-amplificarea variantelor repetate de secvență simplă din eșantioane de ADN grupate pentru cartografierea rapidă a noilor mutații ale șoricelului

,

Genomics

,

1994

, vol.

21

(pag.

626

632

)

28

Rinchik
E.M.

,

Cărpinița
D.A.

,

Lung
C.L.

.

Deletion mapping of four loci defined by N -ethyl -N -nitrosourea-induced postimplantation-lethal mutations within the pid-Hbb region of mouse chromosome 7

,

Genetics

,

1993

, vol.

135

(pag.

1117

1123

)

29

King
D.P.

,

Zhao
Y.

,

Sangoram
A.M.

,

Wilsbacher
L.D.

,

Tanaka
M.

,

Antoch
M.P.

,

Steeves
T.D.L.

,

Vitaterna
M.H.

,

Kornhouser
J.H.

,

Lowrey
P.L.

,

Turek
F.W.

,

Takahashi
J.S.

.

Positional cloning of the mouse circadian Clock gene

,

Cell

,

1997

, vol.

89

(pag.

641

653

)

30

Cotton
R.

.

Slowly but surely towards better scanning for mutations

,

Trends Genet.

,

1997

, vol.

13

(pag.

43

46

)

31

Gradia
S.

,

Subramanian
D.

,

Wilson
T.

,

Acharya
S.

,

Makhov
A.

,

Griffith
J.

,

Fishel
R.

.

hMSH2-hMSH6 formează o clemă glisantă independentă de hidroliză pe ADN nepotrivit

,

Mol. Cell

,

1999

, vol.

3

(pg.

255

261

)

32

You
Y.

,

Bergstrom
R.

,

Klemm
M.

,

Lederman
B.

,

Nelson
H.

,

Ticknor
C.

,

Jaenisch
R.

,

Schimenti
J.

.

Complexe de deleție cromozomială la șoareci prin iradierea celulelor stem embrionare

,

Nature Genet.

,

1997

, vol.

15

(pag.

285

288

)

33

Thomas
J.W.

,

LaMantia
C.

,

Magnusson
T.

.

Mutații induse de razele X în celulele stem embrionare de șoarece

,

Proc. Natl Acad. Sci. USA

,

1998

, vol.

95

(pg.

1114

1119

)

34

Smith
D.J.

,

Rubin
E.M.

.

Screening funcțional și trăsături complexe: secvențe umane 21q22.2 care afectează învățarea la șoareci

,

Hum. Mol. Genet.

,

1997

, vol.

6

(pg.

1729

1733

)

35

Nakagata
N.

,

Takshima
T.

.

Crioconservarea spermatozoizilor de șoarece din tulpini consangvinizate și hibride F1

,

Exp. Anim.

,

1993

, vol.

42

(pg.

317

320

)

36

Sztein
J.M.

.

Motilitatea spermatozoizilor de șoarece crioconservați afectată de temperatura de recoltare și de viteza de decongelare

,

Cryobiology

,

1997

, vol.

35

(pag.

46

52

)

37

Songsasen
N.

,

Leibo
S.

.

Crioconservarea spermatozoizilor de șoarece

,

Criobiologie

,

1997

, vol.

35

(pag.

255

269

)

38

Marschall
S.

,

Hrabe de Angelis
M.

.

Crioconservarea spermatozoizilor de șoarece: dublați spațiul pentru șoareci

,

Trends Genet.

,

1999

, vol.

15

pag.

128131

39

Wakayama
T.

,

Yanagimachi
R.

.

Development ofnormal mice ofnormal mice from oocytes injected with freeze-dried spermatozoid

,

Nature Biotechnol.

,

1998

, vol.

16

(pag.

639

641

)

40

Eppig
J.T.

,

Strivens
M.

.

Finding a mouse: the International Mouse Strain Resource (IMSR)

,

Trends Genet.

,

1999

, vol.

15

(pag.

81

82

)

41

Hustad
C.M.

,

Perry
W.L.

,

Siracusa
L.D.

,

Rasberry
C.

,

Cobb
L.

,

Cattanach
B.M.

,

Kovatch
R.

,

Copeland
N.G.

,

Jenkins
N.A.

.

Caracterizarea genetică moleculară a șase alele recesive viabile ale locusului agouti la șoarece

,

Genetica

,

1995

, vol.

1995

(pag.

255

265

)

42

Russell
L.B.

,

Russell
W.L.

,

Rinchik
E.M.

,

Hunsicker
P.R.

.

Allen
J.W.

,

Bridges
B.A.

,

Lyon
M.F.

,

Moses
M.J.

,

Russell
L.B.

.

Factori care afectează natura mutațiilor induse

,

Banbury Report

,

1990

, vol.

Vol. 34
Cold Spring Harbor, New York, NY
Cold Spring Harbor Laboratory Press

(pg.

271

289

)

43

Su
L.K.

,

Kinzler
K.W.

,

Vogelstein
B.

,

Preisinger
A.C.

,

Moser
A.R.

,

Luongo
C.

,

Gould
K.A.

,

Dove
W.F.

.

Neoplazia intestinală multiplă cauzată de o mutație în omologul murin al genei APC

,

Science

,

1992

, vol. I, nr. 1.

256

(pg.

668

670

)

44

Marker
P.C.

,

Seung
K.

,

Bland
A.E.

,

Russell
L.B.

,

Kingsley
D.M.

.

Spectrum of Bmp5 mutations from germline mutagenesis experiments in mice

,

Genetics

,

1997

, vol.

145

(pag.

435

443

)

45

Klopp
N.

,

Favor

J.

,

Loster

J.

,

Lutz
R.B.

,

Neuhauser-Klaus
A.

,

Prescott
A.

,

Pretsch
W.

,

Quinlan
R.A.

,

Sandilands
A.

,

Vrensen
G.F.J.M.

,

Graw
J.

.

Trei mutanți de cataractă murină ( Cat2 ) sunt defectuoși în diferite gene γ-cristaline

,

Genomics

,

1998

, vol. I, nr. 1, București.

52

(pg.

152

158

)

46

Im
W.B.

,

Phelps
S.F.

,

Copen
E.H.

,

Adams
E.G.

,

Slightom
J.L.

,

Chamberlain
J.S.

.

Expresia diferențială a izoformelor distrofinei în tulpini de șoareci mdx cu diferite mutații

,

Hum. Mol. Genet.

,

1996

, vol.

5

(pag.

1149

1153

)

47

Steele
E.C.

,

Lyon
M.F.

,

Favor
J.

,

Guillot
P.V.

,

Boyd
Y.

,

Church
R.L.

.

O mutație în gena conexinei 50 ( Cx50 ) este un candidat pentru cataracta de șoarece No2

,

Curr. Eye Res.

,

1998

, vol.

17

(pag.

883

889

)

48

Pearce
S.R.

,

Peters
J.

,

Ball
S.

,

Morgan
M.J.

,

Walker
J.I.H.

,

Faik
P.

.

Caracterizarea secvențială a mutanților de glucofosfat izomerază indusă de ENU la șoarece

,

Mamm. Genome

,

1995

, vol.

6

(pg.

858

861

)

49

Sanders
S.

,

Smith
D.P.

,

Thomas
G.A.

,

Williams
E.D.

.

Mutația secvenței de consens a situsului de racordare a glucozei-6-fosfat dehidrogenazei (G6PD) asociată cu deficitul enzimei G6PD

,

Mutat. Res.

,

1997

, vol.

374

(pg.

79

87

)

50

Popp
R.A.

,

Bailiff
E.G.

,

Skow
L.C.

,

Johnson
F.M.

,

Lewis
S.E.

.

Analysis of a mouse α-globin gene gene mutation induced by ethylnitrosourea

,

Genetics

,

1983

, vol.

105

(pag.

157

167

)

51

Jones
J.

,

Peters
J.

.

Caracterizarea moleculară a unei tranziții de la A:T la G:C în gena Hbb-b1 a omologului murin al hemoglobinei Rainier

,

Biochem. Genet.

,

1991

, vol.

29

(pg.

617

626

)

52

Cordes
S.P.

,

Barsh
G.S.

.

The mouse segmentation gene kr encodes a novel basic domain-leucine zipper transcription factor

,

Cell

,

1994

, vol. 1.

79

(pg.

1025

1034

)

53

Sandaluche
R.

,

Pretsch
W.

,

Chatterjee
B.

,

Gimbel
W.

,

Graw
J.

,

Favor

J.

.

Analiza moleculară a patru mutanți de lactat dehidrogenază-A la șoarece

,

Mamm. Genome

,

1994

, vol.

5

(pg.

777

780

)

54

Pretch
W.

,

Chatterjee
B.

,

Favor
J.

,

Merkle
S.

,

Sandulache
R.

.

Caracterizarea moleculară, genetică și biochimică a mutațiilor activității enzimei lactat dehidrogenază-A la Mus musculus

,

Mamm. Genome

,

1998

, vol.

9

(pg.

144

149

)

55

Brannan
C.I.

,

Bedell
M.A.

,

Resnick
J.K.

,

Eppig
J.J.

,

Handel
M.A.

,

Williams
D.E.

,

Lyman
S.D.

,

Donovan
P.J.

,

Jenkins
N.A.

,

Copeland
N.G.

.

Anomalii de dezvoltare la șoarecii Steel17H rezultă dintr-un defect de splicing în coada citoplasmatică a factorului Steel

,

Gene Development

,

1992

, vol. I, nr. 1.

6

(pg.

1832

1842

)

56

Steingrimsson
E.

,

Favor
J.

,

Ferre-D’Amara
A.F.

,

Copeland
N.G.

,

Jenkins
N.A.

.

Mitfmi-enu122 este o mutație missense în domeniul de dimerizare HLH

,

Mamm. Genome

,

1998

, vol.

9

(pg.

250

252

)

57

Huang
J.-.D.

,

Cope
M.J.T.V.

,

Mermall
V.

,

Strobel
M.C.

,

Kendrick-Jones
J.

,

Russell
L.B.

,

Mooseker
M.S.

,

Copeland
N.G.

,

Jenkins
N.A.

.

Disecția genetică moleculară a miozinei-VA neconvenționale de șoarece: mutații în regiunea capului

,

Genetică

,

1998

, vol. I, nr. 1, București, Ed.

148

(pg.

1951

1961

)

58

Huang
J.-ul.D.

,

Mermall
V.

,

Strobel
M.C.

,

Russell
L.B.

,

Mooseker
M.S.

,

Copeland
N.G.

,

Jenkins
N.A.

.

Disecția genetică moleculară a miozinei-VA neconvenționale de șoarece: mutații în regiunea cozii

,

Genetica

,

1998

, vol. I, nr. 1, București, Ed.

148

(pg.

1963

1972

)

59

Mburu
P.

,

Liu
X.Z.

,

Walsh
J.

,

Saw
D.J.

,

Cope
M.J.

.

,

Gibson
F.

,

Kendrick-Jones
J.

,

Steel
K.P.

,

Brown
S.D.M.

.

Analiza mutațională a genei surdității miozinei VIIA la șoarece

,

Gene Func.

,

1997

, vol.

1

pg.

191203
60

McDonald
J.D.

,

Charlton
C.K.

.

Caracterizarea mutațiilor la nivelul locusului fenilalanin-hidroxilazei la șoarece

,

Genomics

,

1997

, vol.

39

(pg.

402

405

)

61

Zingg
B.C.

,

Pretsch
W.

,

Mohrenweiser
H.W.

.

Analiza moleculară a patru mutanți de triosefosfat izomerază nulă indusă de ENU la Mus musculus

,

Mutat. Res.

,

1995

, vol.

328

(pg.

163

173

)

62

Zdarsky
E.

,

Favor
J.

,

Jackson
I.J.

.

Bazele moleculare ale mutației brown, o veche mutație la șoareci, și ale unui revertant indus la tipul sălbatic

,

Genetica

,

1990

, vol. I, nr. 1, Ed.

126

(pg.

443

449

)

63

Rogers
D.C.

,

Fisher
E.M.

,

Brown
S.D.

,

Peters
J.

,

Hunter
A.J.

,

Martin
J.E.

.

SHIRPA, o propunere de protocol pentru evaluarea cuprinzătoare a fenotipului

,

Mamm. Genome

,

1997

, vol.

8

(pg.

711

713

)

64

Hrabe de Angelis
M.

,

Balling
R.

.

Large scale ENU screens in the mouse: genetics meets genomics

,

Mutat. Res.

,

1998

, vol.

400

(pg.

25

32

)

65

Justiție
M.J.

.

Jackson
I.

,

Abbott
C.

.

Mutagenesis ofthe mouse germline

,

Mouse Genetics and Transgenics: A Practical Approach

,

1999
Oxford
Oxford University Press
în presă

66

Schimenti
J.

,

Bucan
M.

.

Functional genomics in the mouse: phenotype-based mutagenesis screens

,

Genome Res.

,

1998

, vol.

8

(pg.

698

710

)

67

Hill
R.E.

,

Favor
J.

,

Hogan
B.L.M.

,

Ton
C.C.

,

Saunders
G.F.

,

Hanson
I.M.

,

Prosser
J.

,

Jordan
T.

,

Hastie
N.D.

,

van Heyningen
V.

.

Ochiul mic al șoarecelui rezultă din mutații într-o genă care conține o homeobox asemănătoare unei perechi

,

Nature

,

1991

, vol.

354

(pg.

522

525

)

.

Lasă un răspuns

Adresa ta de email nu va fi publicată.