- Cechy wyróżniające
- Wirion
- Morfologia
- Właściwości fizykochemiczne i fizyczne
- Kwas nukleinowy
- Białka
- Lipidy
- Węglowodany
- Organizacja genomu i replikacja
- Biologia
- Zakres żywicieli
- Przekazywanie
- Rozmieszczenie geograficzne
- Patogenność
- Antygeniczność
- Kryteria rozgraniczenia gatunków
- Gatunek członkowski
- Nazwy wirusów, wybór przykładowych izolatów i skróty wirusów nie są oficjalnymi oznaczeniami ICTV.
- Powiązane, niesklasyfikowane wirusy
- Nazwy wirusów i skróty wirusów nie są oficjalnymi oznaczeniami ICTV.
Cechy wyróżniające
Końcówka 5′ genomu posiada czapeczkę typu I (m7GpppAmp) niespotykaną u wirusów innych rodzajów. Większość flawiwirusów jest przenoszona na żywicieli kręgowych przez stawonogi, komary lub kleszcze, w których aktywnie się replikują. Niektóre flawiwirusy przenoszą się między gryzoniami lub nietoperzami bez znanych wektorów stawonogów.
Wirion
Morfologia
Wiriony mają średnicę 50 nm i kulisty kształt (rysunek 1.Flavivirus). Można wyróżnić dwie formy wirusa. Dojrzałe wirusy zawierają dwa zakodowane w wirusie białka związane z błoną, E i M. Niedojrzałe wirusy wewnątrzkomórkowe zawierają prekursor prM, który jest proteolitycznie rozszczepiany do M podczas dojrzewania (Stadler et al., 1997). W niektórych przypadkach z zakażonych komórek uwalniane są również formy częściowo dojrzałe/ niedojrzałe. Struktury wirionów wirusa dengi (DENV) i wirusa Zachodniego Nilu (WNV) zostały określone metodą krystalografii rentgenowskiej (Kuhn i in., 2002, Mukhopadhyay i in., 2003). Białko otoczki, E, jest dimeryczną cząsteczką o kształcie pręta, która jest zorientowana równolegle do błony i nie tworzy kolców w swojej konformacji w neutralnym pH (Yu i in., 2008). Rekonstrukcje obrazu z mikrografów krioelektronowych (Rysunek 1.Flavivirus) wykazały, że otoczka wirionu ma symetrię ikosaedryczną, w której dimery białka E są zorganizowane w układzie przypominającym jodełkę.
Rysunek 1.Flavivirus. Trójwymiarowe mikroskopowe rekonstrukcje krioelektronowe niedojrzałych (po lewej) i dojrzałych (po prawej) cząstek izolatu wirusa dengi (dzięki uprzejmości M. Rossmanna). Pokazano rekonstrukcję powierzchni niedojrzałego wirusa dengi w rozdzielczości 12,5Å (po lewej) i dojrzałego wirusa dengi w rozdzielczości 10Å (po prawej). Wirusy są przedstawione w skali, ale nie są pokolorowane w skali. Trójkąty zakreślają jedną jednostkę ikozaedryczną.
Właściwości fizykochemiczne i fizyczne
Wirion Mr nie został dokładnie określony. Dojrzałe wirusy sedymentują przy około 200S i mają gęstość wyporu około 1,19 g cm-3 w sacharozie (Kokorev et al., 1976). Wirusy są stabilne w lekko zasadowym pH 8,0, ale łatwo ulegają inaktywacji pod wpływem kwaśnego pH, temperatury powyżej 40 °C, rozpuszczalników organicznych, detergentów, światła ultrafioletowego i promieniowania gamma.
Kwas nukleinowy
RNA wirionów flawiwirusów jest dodatnio-sensownym zakaźnym ssRNA o długości 9,2-11,0 kb. Koniec 5′ genomu posiada czapeczkę typu I (m-7GpppAmp), gdzie po A następuje wysoce konserwatywny nukleotyd G. Końce 3′-końca pozbawione są końcowego traktu poli(A) i zakończone są konserwowanym dinukleotydem CU.
Białka
Wirusy zawierają trzy białka strukturalne: kapsyd (C, 11 kDa), główne białko otoczki (E, 50 kDa), i albo prM (26 kDa), w niedojrzałych wirusach, albo M (8 kDa), w dojrzałych wirusach. Białko E jest wirusową hemaglutyniną, która pośredniczy zarówno w wiązaniu się z receptorem, jak i w zależnej od kwaśnego pH aktywności syntezy po wychwyceniu przez endocytozę indukowaną receptorem. W zakażonych komórkach syntetyzowanych jest siedem białek niestrukturalnych: NS1 (46 kDa), NS2A (22 kDa), NS2B (14 kDa), NS3 (70 kDa), NS4A (16 kDa), NS4B (27 kDa) i NS5 (103 kDa). Niektórzy członkowie rodzaju posiadają sekwencje, które wydają się skłaniać część rybosomów ulegających translacji do przesunięcia o -1 nt i kontynuowania translacji w nowej ramce odczytu w celu wytworzenia białka fuzyjnego „transframe” (Firth i Atkins 2009). Gdy jest to funkcjonalnie wykorzystywane, określa się to jako programowane-1 rybosomalne przesunięcie ramki (programmed-1 ribosomal frameshifting, -1 PRF). NS1 ma wiele form i ról, z formą związaną z komórkami funkcjonującą w replikacji wirusowego RNA i formą wydzielaną, która reguluje aktywację dopełniacza. Jedna z takich form, białko NS1′, jest produktem zmiany ramki -1 rybosomalnej i odgrywa rolę w neuroinwazyjności wirusa (Melian i in., 2010). N-końcowa jedna trzecia NS1 tworzy wraz z NS2B kompleks wirusowej proteazy serynowej, który jest zaangażowany w przetwarzanie poliproteiny. C-końcowa część NS3 zawiera domenę helikazy RNA zaangażowaną w replikację RNA, jak również aktywność trifosfatazy RNA, która jest prawdopodobnie zaangażowana w tworzenie struktury 5′-końcowego czapeczki wirusowego RNA. NS5 jest największym i najbardziej konserwowanym białkiem, które działa jako wirusowy RdRP i również posiada aktywność metylotransferazy zaangażowanej w modyfikację struktury kapu wirusowego.
Lipidy
Wirusy zawierają około 17% wagowych lipidów; lipidy pochodzą z błon komórek gospodarza.
Węglowodany
Wirusy zawierają około 9% wagowych węglowodanów (glikolipidy, glikoproteiny); ich skład i struktura zależą od komórki gospodarza (kręgowca lub stawonoga). Miejsca N-glikozylacji są obecne w białkach prM (1 do 3 miejsc), E (0 do 2 miejsc) i NS1 (1 do 3 miejsc).
Organizacja genomu i replikacja
Genomowe RNA reprezentuje jedyne wirusowe RNA posłańca w zakażonych komórkach. Składa się z pojedynczego długiego ORF o długości ponad 10 000 nt, który koduje wszystkie białka strukturalne i niestrukturalne i jest otoczony przez NCR na 5′- i 3′-końcowym końcu (Rysunek 2.Flavivirus).
Rysunek 2.Flavivirus. Organizacja genomu flawiwirusów (nie w skali) i przetwarzanie poliprotein. RNA wirionu ma około 11 kb. Na górze znajduje się genom wirusowy z regionami kodującymi białka strukturalne i niestrukturalne oraz 5′- i 3′-NCR. Ramki poniżej genomu wskazują białka wirusowe generowane przez kaskadę proteolitycznego przetwarzania. Symbole P, H i R wskazują lokalizację proteazy NS3, helikazy NS3 RNA i domen NS5 RdRP, odpowiednio.
Zarówno 5′-NCR jak i 3′-NCR zawierają motywy sekwencji RNA, które są zaangażowane w translację wirusowego RNA, replikację i prawdopodobnie pakowanie. Chociaż struktura drugorzędowa RNA i funkcja niektórych elementów są zachowane, skład sekwencji, długość i dokładna lokalizacja mogą się znacznie różnić między różnymi członkami rodzaju, w szczególności między flawiwirusami przenoszonymi przez kleszcze i komary. W niektórych przypadkach 3′-NCR wirusa kleszczowego zapalenia mózgu, na przykład, zawiera wewnętrzną ścieżkę poli(A). Infekcja wirusowa wywołuje dramatyczną rearanżację struktur błony komórkowej w obrębie okołojądrowego retikulum endoplazmatycznego (ER) i powoduje powstawanie pęcherzykowych pakietów pochodzących z ER, które najprawdopodobniej stanowią miejsca replikacji wirusa. Po translacji przychodzącego genomowego RNA, replikacja RNA rozpoczyna się od syntezy komplementarnych nici ujemnych, które są następnie wykorzystywane jako szablony do produkcji dodatkowych cząsteczek o dodatniej długości nici genomowej. Są one syntetyzowane w mechanizmie półkonserwatywnym z udziałem replikacyjnych intermediatów (zawierających regiony dwuniciowe oraz powstające cząsteczki jednoniciowe) oraz form replikacyjnych (cząsteczki dupleksowe RNA). Translacja rozpoczyna się zwykle od pierwszego AUG w ORF, ale może również zachodzić od drugiego AUG w ramce, znajdującego się 12-14 kodonów niżej u flawiwirusów przenoszonych przez komary. Poliproteina jest przetwarzana przez proteazy komórkowe i wirusową proteazę serynową NS2B-NS3, dając początek dojrzałym białkom strukturalnym i niestrukturalnym. Topologia białek w stosunku do ER i cytoplazmy jest określana przez wewnętrzne sekwencje sygnałowe i stop-transferowe. Cząstki wirusa można najpierw zaobserwować w szorstkim retikulum endoplazmatycznym, które jest uważane za miejsce składania wirusa. Te niedojrzałe wirusy są następnie transportowane przez systemy błonowe szlaków wydzielniczych gospodarza na powierzchnię komórki, gdzie dochodzi do egzocytozy. Tuż przed uwolnieniem wirionu białko prM jest rozszczepiane przez furynę lub komórkową proteazę podobną do furyny, co prowadzi do powstania dojrzałych wirionów. Zakażone komórki uwalniają również niezakaźną cząstkę subwirusową, która ma niższy współczynnik sedymentacji niż cały wirus (70S zamiast 200S) i wykazuje aktywność hemaglutynacji.
Biologia
Zakres żywicieli
Flawiwirusy mogą zakażać różne gatunki kręgowców i w wielu przypadkach stawonogów. Niektóre wirusy mają ograniczony zakres żywicieli kręgowych (np. tylko naczelne), podczas gdy inne mogą zakażać i replikować się u wielu różnych gatunków (ssaki, ptaki, itp.). Zwykłą drogą zakażenia stawonogów jest odżywianie się przez nie na żywicielu kręgowym, ale w przypadku flawiwirusów przenoszonych przez kleszcze opisano również nie-wirusowe przenoszenie między wektorami. Nowa grupa niesklasyfikowanych wirusów z tego rodzaju, w tym wirus czynnika rozszczepiającego komórki, wydaje się zakażać tylko komary, a kilka innych, wysoce genetycznie odrębnych flawiwirusów występujących tylko u owadów zostało obecnie zidentyfikowanych (Blitvich i Firth 2015).
Przekazywanie
Większość flawiwirusów to wirusy przenoszone przez stawonogi z cyklami przenoszenia z hematofagicznych wektorów stawonogów na żywicieli kręgowców. Około 50% znanych flawiwirusów przenoszonych jest przez komary, 28% przez kleszcze, a pozostałe przenoszą się między gryzoniami lub między nietoperzami bez znanych wektorów stawonogów. Dla niektórych flawiwirusów cykl przenoszenia nie został jeszcze zidentyfikowany. W niektórych przypadkach flawiwirusy mogą być przenoszone na ludzi przez produkty krwiopochodne, przeszczepy organów, niepasteryzowane mleko lub aerozole. Wiadomo, że niektóre flawiwirusy przenoszone przez kleszcze mogą być przenoszone bezpośrednio pomiędzy kleszczami w procesie znanym jako przenoszenie niewirowe. U stawonogów-wektorów wirusy mogą być również przenoszone trans-owarialnie lub pionowo (komary, kleszcze) i transstadialnie (kleszcze). Mechanizmy przenoszenia wirusów z udziałem wyłącznie owadzich flawiwirusów mogą obejmować przenoszenie pionowe, ale należy rozważyć inne mechanizmy, aby wyjaśnić sukces, z jakim wirusy te rozprzestrzeniły się na całym świecie.
Rozmieszczenie geograficzne
Flawiwirusy mają rozmieszczenie na całym świecie, ale poszczególne gatunki są ograniczone do określonych obszarów endemicznych lub epidemicznych (np, wirus żółtej gorączki w tropikalnych i subtropikalnych regionach Afryki i Ameryki Południowej; wirus dengi w tropikalnych obszarach Azji, Oceanii, Afryki, Australii i obu Ameryk; wirus japońskiego zapalenia mózgu w południowo-wschodniej Azji; wirus kleszczowego zapalenia mózgu w Europie i północnej Azji).
Patogenność
Ponad 50% znanych flawiwirusów było związanych z chorobami u ludzi, w tym wiele ważnych patogenów ludzkich, takich jak wirus żółtej gorączki, wirus dengi, wirus Zika, wirus japońskiego zapalenia mózgu, wirus Zachodniego Nilu i wirus kleszczowego zapalenia mózgu. Wywołane choroby mogą być związane z objawami ze strony ośrodkowego układu nerwowego (np. zapalenie opon mózgowych, zapalenie mózgu), gorączką, bólem stawów, wysypką i gorączką krwotoczną. Kilka flawiwirusów jest patogennych dla zwierząt domowych lub dzikich (indyk, świnia, koń, owca, pies, głuszec, piżmak) i powoduje choroby o znaczeniu gospodarczym.
Antygeniczność
Wszystkie flawiwirusy są spokrewnione serologicznie, co można wykazać za pomocą testów wiążących, takich jak ELISA oraz zahamowania hemaglutynacji przy użyciu przeciwciał poliklonalnych i monoklonalnych. Testy neutralizacji są bardziej dyskryminujące i zostały wykorzystane do identyfikacji bliżej spokrewnionych serokompleksów Flavivirus (jak wskazano na rysunku 1. Flaviviridae), chociaż nie do poziomu gatunku. Białko otoczki E jest głównym celem dla przeciwciał neutralizujących i indukuje odporność ochronną. Białko E indukuje również nieneutralizujące przeciwciała reagujące krzyżowo z flawiwirusami. Miejsca antygenowe zaangażowane w neutralizację zostały przypisane do każdej z trzech domen strukturalnych białka E. Białka prM i NS1 mogą również indukować przeciwciała, które chronią zakażone zwierzęta przed śmiertelną infekcją.
Kryteria rozgraniczenia gatunków
Kryteria rozgraniczenia gatunków w rodzaju obejmują:
- Dane dotyczące sekwencji nukleotydów i wydedukowanych aminokwasów.
- Właściwości antygenowe.
- Związek geograficzny.
- Związek wektorowy.
- Związek gospodarza.
- Związek chorobowy.
- Właściwości ekologiczne.
Demarkacja gatunków uwzględnia kombinację każdego z kryteriów wymienionych powyżej. Podczas gdy pokrewieństwo sekwencji nukleotydów i wynikające z niego filogenezy są ważnymi kryteriami rozgraniczania gatunków, inne wymienione kryteria mogą być szczególnie użyteczne w rozgraniczaniu genetycznie blisko spokrewnionych wirusów. Na przykład dalekowschodnie (FE) szczepy wirusa kleszczowego zapalenia mózgu wykazują wyraźne różnice ekologiczne w porównaniu z wirusem omskiej gorączki krwotocznej, pomimo faktu, że są one genetycznie stosunkowo blisko spokrewnione. Szczepy FE wirusa kleszczowego zapalenia mózgu są związane głównie z kleszczami Ixodes persulcatus w środowisku leśnym w dalekiej wschodniej Rosji, podczas gdy wirus omskiej gorączki krwotocznej występuje w stepowych regionach zachodniej Syberii, związany głównie z Dermacentor spp. i w mniejszym stopniu z Ixodes spp. Wirusy te są również antygenowo rozróżnialne w testach neutralizacji, w których wykorzystuje się surowice rekonwalescentów.
Wirus choroby skokowej i wirus kleszczowego zapalenia mózgu stanowią kolejny przykład wirusów, w przypadku których, pomimo bliskich związków genetycznych i podobnych zakresów żywicieli, wykazują one różne ekologie (wrzosowiska versus lasy), patogeniczność (cietrzew, owce/kózki versus ludzie) i rozmieszczenie geograficzne (Wielka Brytania versus Europa/Eurazja), co uzasadnia ich klasyfikację jako członków odrębnych gatunków, wirusa choroby skokowej i wirusa kleszczowego zapalenia mózgu.
Tabela 1.Flavivirus. Flawiwirusy pogrupowane według wektora i żywiciela.
Gatunek wirusa |
Nazwa wirusa |
Numer akredytacji |
Skrót nazwy wirusa |
|
Tick-przenoszone, żywiciel ssaki |
||||
Wirus choroby leśnej |
Wirus choroby leśnej |
DQ235145 |
GYV |
|
Kyasanur Wirus choroby leśnej |
Kyasanur Wirus choroby leśnej |
AY323490 |
KFDV |
|
Wirus gorączki krwotocznej Alkhumra |
AF331718 |
AHFV |
||
Wirus Langatu |
Wirus Langata |
AF253419 |
LGTV |
|
Wirus choroby wrzodowej chory wirus |
Louping chory wirus |
Y07863 |
LIV |
|
Podtyp brytyjski |
D12937 |
LIV-.Brit |
||
Podtyp irlandzki |
X86784 |
LIV-Ir |
||
Podtyp hiszpański |
DQ235152 |
LIV-.Hiszpania |
||
Podtyp wirusa tureckiego zapalenia mózgu owiec |
DQ235151 |
TSEV |
||
Podtyp wirusa greckiego zapalenia mózgu kóz Podtyp wirusa |
DQ235153 |
GGEV |
||
Wirus gorączki krwotocznej Omska |
Wirus gorączki krwotocznej Omska |
AY193805 |
OHFV |
|
Wirus Powassan |
Wirus Powassan |
L06436 |
POWV |
|
wirus kleszczy jeleni |
AF311056 |
DTV |
||
wirus królewskiej farmy |
Royal Farm virus |
DQ235149 |
RFV |
|
Wirus kleszczowego zapalenia mózguWirus kleszczowego zapalenia mózgu |
Podtyp europejski |
U27495 |
TBEV-Eur |
|
Podtyp dalekowschodni |
X07755 |
TBEV-.FE |
||
Podtyp syberyjski |
L40361 |
TBEV-Sib |
||
Zakażenie kleszczami, żywiciel ptak morski |
||||
Wirus Meaban |
Wirus Meaban |
DQ235144 |
MEAV |
|
Wirus rafy Saumareza |
Wirus rafy Saumareza wirus |
DQ235150 |
SREV |
|
Tyuleniy virus |
Wirus Tyulenij |
KF815939 |
TYUV |
|
Prawdopodobnie przenoszony przez kleszczeprzenoszony przez kleszcze |
||||
Wirus Kadam |
Wirus Kadam wirus |
DQ235146 |
KADV |
|
Mosquito-przenoszone, Grupa wirusa Aroa |
||||
Wirus Aroa |
Wirus Aroa |
AY632536 |
AROAV |
|
Wirus Bussuquara |
AF013366 |
BSQV |
||
Iguape virus |
AF013375 |
IGUV |
||
Wirus Naranjal |
AF013390 |
NJLV |
||
Mosquito-przenoszone, Grupa wirusów dengi |
||||
Wirus dengi |
Wirus dengi 1 |
U88536 |
DENV-1 |
|
Wirus dengi 2 |
U87411 |
DENV-2 |
||
Wirus dengi 3 |
M93130 |
DENV-.3 |
||
Wirus dengi 4 |
AF326573 |
DENV-4 |
||
Przenoszony przez komary, Grupa wirusów japońskiego zapalenia mózgu |
||||
Wirus Kacipacore |
Wirus Kacipacoré |
KF917536 |
CPCV |
|
Wirus japońskiego |
AF013384 |
KOUV |
||
Wirus zapalenia mózgu Doliny Murray |
Wirus Alfuy |
AF013360 |
ALFV |
|
Murray Valley encephalitis virus |
AF161266 |
MVEV |
||
St Louis encephalitis virus |
St. Louis encephalitis virus |
DQ525916 |
SLEV |
|
Wirus Usutu |
Wirus Usutu |
Wirus Usutu |
AY453411 |
USUV |
Wirus Zachodniego Nilu |
Wirus Kunjin |
D00246 |
KUNV |
|
Wirus Zachodniego Nilu |
M12294 |
WNV |
||
Wirus Yaounde |
Wirus Yaounde |
AF013413 |
YAOV |
|
Mosquito-przenoszone, Grupa wirusa Kokobera |
||||
Wirus Kokobera |
Wirus Kokobera |
AY632541 |
KOKV |
|
Wirus Stratford |
AF013407 |
STRV |
||
Mosquito-przenoszone, Grupa wirusa Ntaya |
||||
Wirus Bagaza |
Wirus Bagaza |
AY632545 |
BAGV |
|
Wirus Ilheus |
Wirus Ilhéus |
AY632539 |
ILHV |
|
Rocio virus |
AF013397 |
ROCV |
||
Izraelski wirus zapalenia opon mózgowych indyków |
Izraelski wirus zapalenia opon mózgowych indyków wirus zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych |
AF013377 |
ITV |
|
Ntaya wirus |
Ntaya virus |
JX236040 |
NTAV |
|
Tembusu wirus |
Tembusu |
JF895923 |
TMUV |
|
Zika wirus |
Wirus Zika |
AY632535 |
ZIKV |
|
Mosquito-przenoszony przez komary, grupa wirusów żółtej gorączki |
||||
Wirus Sepik |
Wirus Sepik |
DQ837642 |
SEPV |
|
Wirus Wesselsbron |
Wirus Wesselsbron wirus |
EU707555 |
WESSV |
|
Wirus żółtej gorączki |
wirus gorączki żółtej |
X03700 |
YFV |
|
Prawdopodobnie przenoszony przez komary.borne, Grupa wirusa Kedougou |
||||
Wirus Kedougou |
Wirus Kedougou |
AY632540 |
KEDV |
|
Prawdopodobnie przenoszony przez komary, Grupa wirusów Edge Hill |
||||
Wirus Banzi |
Wirus Banzi |
Wirus Banzi |
DQ859056 |
BANV |
Wirus Bouboui |
Wirus Bouboui |
Wirus Bouboui |
DQ859057 |
BOUV |
Wirus Edge Hill |
Wirus Edge Hill virus |
DQ859060 |
EHV |
|
Jugra virus |
Jugra wirus |
DQ859066 |
JUGV |
|
Wirus Saboya |
Potiskum virus |
DQ859067 |
POTV |
|
Saboya virus |
Saboya wirus |
DQ859062 |
SABV |
|
Uganda S virus |
Uganda S virus |
DQ859065 |
UGSV |
|
Nieznany wektor, Grupa wirusów nietoperza Entebbe |
||||
Wirus nietoperza Entebbe |
Wirus nietoperza Entebbe |
Wirus nietoperza Entebbe |
DQ837641 |
ENTV |
Wirus Sokuluk |
Wirus Sokuluk |
AF013405 |
SOKV |
|
Wirus Yokose |
Wirus Yokose wirus |
AB114858 |
YOKV |
|
Nieznany wektor, Grupa wirusów Modoc |
||||
Wirus Apoi |
Wirus Apoi |
Wirus Apoi |
AF160193 |
APOIV |
Cowbone Ridge virus |
Cowbone Ridge virus |
Cowbone Ridge virus |
AF013370 |
CRV |
Jutiapa wirus |
Jutiapa virus |
KJ469371 |
JUTV |
|
Modoc virus |
Modoc virus |
AJ242984 |
MODV |
|
Wirus Sal Vieja |
Wirus Sal Vieja |
Wirus Sal Vieja |
AF013401 |
SVV |
San Perlita virus |
San Perlita virus |
San Wirus Perlita |
AF013402 |
SPV |
Nieznany wektor, Grupa wirusów Rio Bravo |
||||
Wirus nietoperza Bukalasa |
Wirus nietoperza Bukalasa |
AF013365 |
BBV |
|
Wirus z wyspy Kary |
Wirus z wyspy Kary |
AF013368 |
CIV |
|
Dakarski wirus nietoperzy |
Dakarski wirus nietoperzy |
AF013371 |
DBV |
|
Montana Myotis leukoencephalitis virus |
Montana myotis leukoencephalitis virus |
AJ299445 |
MMLV |
|
Phnom Penh bat virus |
Batu Cave virus |
AF013369 |
BCV |
|
Phnom Penh bat virus |
AF013394 |
PPBV |
||
Rio Bravo virus |
Rio Bravo virus |
AF144692 |
RBV |
Gatunek członkowski
Gatunek | Nazwa wirusa | Izolat | Numer akcydensowy | Numer refSeq | Dostępna sekwencja | Krótki skrót wirusa. | ||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Apoi virus | Apoi virus | ApMAR | AF160193 | NC_003676 | Kompletny genom | APOIV | ||
Aroa virus | Aroa virus | Aroa virus | BeAn 4073 | AY632536 | NC_009026 | Kompletny genom | AROAV | |
Aroa virus | VenA-1809 | AF013362 | Częściowy genom | AROAV | ||||
Wirus Aroa | Bussuquara Wirus | BeAn 4073 | AF013366 | Częściowy genom | BSQV | |||
Wirus Aroa | Wirus Aroa | Iguape virus | SP An71686 | AF013375 | Częściowy genom | IGUV | ||
Aroa virus | Aroa wirus | Wirus Naranjal | 25008 | AF013390 | Częściowy genom | NJLV | ||
Wirus Bagaza | Wirus Bagaza | DakAr B209 | AY632545 | NC_012534 | Kompletny genom | BAGV | ||
Wirus Banzi | Wirus Banzi | SAH 366 | DQ859056 | NC_043110 | Kompletny genomu | BANV | ||
Wirus Bouboui | Wirus Bouboui | DAK AR B490 | DQ859057 | NC_033693 | Kompletny genom | BOUV | ||
Wirus nietoperza Bukalasa | Wirus nietoperza Bukalasa | UGBP-.111 | AF013365 | NC_043111 | Częściowy genom | BBV | ||
Wirus kacyfakory | Wirus kacyfakory | BeAn 3276000 | KF917536 | NC_026623 | Kompletny genom | CPCV | ||
Wirus Wyspy Kary | Wirus Wyspy Kary | P70-1215 | AF013368 | NC_043112 | Częściowy genom | CIV | ||
Wirus Cowbone Ridge | Wirus Cowbone Ridge | W-10986 | AF013370 | NC_043113 | Częściowy genom | CRV | ||
Wirus nietoperzy dakarskich | Wirus nietoperzy dakarskich | 209 | AF013371 | NC_043114 | Częściowy genom | DBV | ||
Wirus dengi | wirus dengi typu 2 | 16681 | U87411 | NC_001474 | Kompletny genom | DENV-2 | ||
wirus dengi | wirus dengi typu 1 | 45AZ5 | U88536 | kompletny genom | DENV-1 | |||
wirus dengi | wirus dengi typu 3 | H87 | M93130 | kompletny genom | DENV-3 | |||
wirus dengi | wirus dengi typu 4 | 814669 | AF326573 | kompletny genom | DENV-4 | |||
Wirus Edge Hill | Wirus Edge Hill | YMP 48 | DQ859060 | NC_030289 | Kompletny genom | EHV | ||
Wirus nietoperza Entebbe | Wirus nietoperza Entebbe | UgIL-30 | DQ837641 | NC_008718 | Kompletny genom | ENTV | ||
Wirus nietoperza z gatunku Entebbe | Wirus Sokuluk | LEIV-400K | AF013405 | Częściowy genom | SOKV | |||
Wirus Gadgets Gully wirus | Gadgets Gully virus | Aus | DQ235145 | NC_033723 | Kompletny genom | GGYV | ||
Wirus Ilheus | Wirus Ilhéus | Original | AY632539 | NC_009028 | Kompletny genom | ILHV | ||
Ilheus virus | Rocio virus | H-34675 | AF013397 | Częściowy genom | ROCV | |||
Izraelski wirus zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych indyków wirus | Izraelski wirus zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych indyków | AF013377 | NC_043115 | Częściowy genom | ITV | |||
Wirus japońskiego zapalenia mózgu | Japońskie zapalenie mózgu | JaOArS982 | M18370 | NC_001437 | Kompletny genom | JEV | ||
Wirus Jugra | Wirus Jugra | P-9-314 | DQ859066 | NC_033699 | Kompletny genom | JUGV | ||
Wirus Jutiapa | Wirus Jutiapa | JG-128 | KJ469371 | NC_026620 | Kompletny genom | JUTV | ||
Wirus Kadam | Wirus Kadam | Uganda | DQ235146 | NC_033724 | Kompletny genom | KADV | ||
Wirus Kedougou | Wirus Kedougou | DakAar D1470 | AY632540 | NC_012533 | Kompletny genom | KEDV | ||
Wirus Kokobera | Wirus Kokobera | AusMRM 32 | AY632541 | NC_009029 | Kompletny genom | KOKV | ||
Wirus Kokobera | Wirus Stratford | AUSC-338 | AF013407 | Częściowy genom | STRV | |||
Wirus Koutango | Wirus Koutango | Dak Ar D1470 | AF013384 | NC_043116 | Częściowy genom | KOUV | ||
Wirus choroby leśnej Kyasanur | Wirus choroby leśnej Kyasanur | AY323490 | NC_039218 | Kompletny genom | KFDV | |||
Wirus choroby leśnej Kyasanur | Alkhumra Wirus gorączki krwotocznej | 1176 | AF331718 | Kompletny genom | AHFV | |||
Wirus Langat | Wirus Langat | TP21 | AF253419 | NC_003690 | Kompletny genom | LGTV | ||
wirus choroby skokowej | wirus choroby skokowej | 369/T2 | Y07863 | NC_001809 | kompletny genom | LIV | ||
wirus choroby skokowej | wirus choroby skokowej-Podtyp brytyjski | LI/31 | D12937 | Częściowy genom | LIV-.Brit | |||
wirus choroby wrzodowej | podtyp irlandzki wirusa choroby wrzodowej | LI/MA54 | X86784 | Częściowy genom | LIV-Ir | |||
Wirus choroby wrzodowej | Podtyp hiszpański wirusa choroby wrzodowej | 87/2617 | DQ235152 | Kompletny genom kodujący | LIV-Hiszpania | |||
Wirus choroby skokowej | Podtyp wirusa tureckiego zapalenia mózgu owiec | TTE80 | DQ235151 | Kompletny genom kodujący | TSEV | |||
Wirus choroby skokowej | Podtyp wirusa encefalitits kozy greckiej | Podtyp wirusa encefalitits kozy greckiej | Vergina | DQ235153 | Kompletny genom kodujący | GGEV | ||
Wirus Meaban | Wirus Meaban wirus | Francja | DQ235144 | NC_033721 | Kompletny genom | MEAV | ||
Modoc virus | Modoc wirus | M544 | AJ242984 | NC_003635 | Genom kompletny | MODV | ||
Montana myotis leukoencephalitis virus | Montana myotis leukoencephalitis virus | USA | AJ299445 | NC_004119 | Kompletny genom | MMLV | ||
Wirus zapalenia mózgu doliny Murray | Wirus zapalenia mózgu doliny Murray | 18629 | AF161266 | NC_000943 | Kompletny genom | MVEV | ||
Wirus zapalenia mózgu doliny Murray | Wirus Alfuy | MRM-3929 | AF013360 | Częściowy genom | ALFV | |||
Wirus Ntaya | Ntaya wirus | IPDIA | JX236040 | NC_018705 | Kompletny genom | NTAV | ||
Omski wirus gorączki krwotocznej | Omski wirus gorączki krwotocznej | Bogoluvovska | AY193805 | NC_005062 | Kompletny genom | OHFV | ||
Phnom Penh bat virus | Phnom Penh bat virus | CAMA-.38D | AF013394 | Częściowy genom | PPBV | |||
Phnom Penh bat virus | Batu Cave virus | P70-1459 | AF013369 | Częściowy genom | BCV | |||
Wirus Powassan | Wirus Powassan wirus | LB | L06436 | NC_003687 | Kompletny genom | POWV | ||
Wirus Powassan | Wirus kleszczy jeleniowatych | Wirus kleszcza jelenia | ctb30 | AF311056 | Kompletny genom kodujący | DTV | ||
Wirus Rio Bravo | Wirus Rio Bravo | RiMAR | AF144692 | NC_003675 | Kompletny genom | RBV | ||
Wirus Królewskiej Farmy | Wirus Królewskiej Farmy | Afganistan | DQ235149 | NC_039219 | Kompletny genomu | RFV | ||
Wirus Saboya | Wirus Saboya | Dak AR D4600 | DQ859062 | NC_033697 | Kompletny genom | SABV | ||
Wirus Saboya | Wirus Potiskum | IBAN 10069 | DQ859067 | Kompletny genom kodujący | POTV | |||
Wirus zapalenia mózgu Saint Louis | St. Louis encephalitis virus | Kern217 | DQ525916 | NC_007580 | Częściowy genom | SLEV | ||
Sal Vieja virus | 38TWM-.106 | AF013401 | NC_043117 | Częściowy genom | SVV | |||
Wirus San Perlita | Wirus San Perlita | 71V-1251 | AF013402 | NC_043118 | Częściowy genom | SPV | ||
Saumarez Reef virus | Saumarez Reef wirus | Australia | DQ235150 | NC_033726 | Kompletny genom | SREV | ||
Wirus Sepik | Wirus Sepik | Wirus Sepik | MK7148 | DQ837642 | NC_008719 | Kompletny genom | SEPV | |
Tembusu Wirus | Wirus Tembusu | JS804 | JF895923 | NC_015843 | Genom kompletny | TMUV | ||
Wirus kleszczowego zapalenia mózgu | Wirus krętkaborene encephalitis virus | tick-borne encephalitis virus-European subtype | Neudoerfl | U27495 | NC_001672 | kompletny genom | TBEV-Eur | |
Wirus kleszczowego zapalenia mózgu | Wirus kleszczowego zapalenia mózgu – podtyp dalekowschodni | Sofjin | X07755 | Częściowy genom | TBEV-FE | |||
Wirus kleszczowego zapalenia mózgu | Wirus kleszczowego zapalenia mózgu-Podtyp syberyjski | Wasilczenko | L40361 | Kompletny genom | TBEV-Sib | |||
Wirus Tyulenij | Wirus Tyulenij | LEIV-6C | KF815939 | NC_023424 | Kompletny genom | TYUV | ||
Wirus S z Ugandy | Wirus S z Ugandy | Uganda | DQ859065 | NC_033698 | Kompletny genom | UGSV | ||
Wirus Usutu | Wiedeń 2001 | AY453411 | NC_006551 | Kompletny genom | USUV | |||
Wesselsbron virus | Wesselsbron virus | SAH177 | EU707555 | NC_012735 | Kompletny genom | WESSV | ||
Wirus Zachodniego Nilu | Wirus Zachodniego Nilu | 956 | M12294 | NC_001563 | Kompletny genom | WNV | ||
Wirus Zachodniego Nilu | Wirus Kunjin | MRM61C | D00246 | Częściowy genom | KUNV | |||
Wirus Jaunde | Wirus Jaunde | DakArY 276 | AF013413 | Częściowy genom | YAOV | |||
Wirus gorączki żółtej | Wirus gorączki żółtej | 17D | X03700 | NC_002031 | Kompletny genom | YFV | ||
Wirus Yokose | Wirus Oita 36 | AB114858 | NC_005039 | Kompletny genom | YOKV | |||
Wirus Zika wirus | Wirus Zika | MR 766 | AY632535 | NC_012532 | Genom kompletny | ZIKV | ||
Wirus Zika | Wirus Zika | Pf13/251013-18 | KY766069 | kompletny genom | ZIKV | |||
Wirus Zika | Wirus Zika | H/PF/2013 | KJ776791 | kompletny genomu | ZIKV | |||
Wirus Zika | Wirus Zika | PRVABC59 | KX377337 | Kompletny genom | ZIKV |
Nazwy wirusów, wybór przykładowych izolatów i skróty wirusów nie są oficjalnymi oznaczeniami ICTV.
Powiązane, niesklasyfikowane wirusy
Nazwa wirusa |
Numer akcesji |
Skrót nazwy wirusa |
|
Mammalian tick- |
DQ859064 |
SPOV |
|
Wirus T’Ho |
EU879061 |
||
Wirusy owadów |
Wirusy specyficzne dlaspecyficzne dla owadów flawiwirusy |
||
Flawiwirusy Aedes |
AB488408 |
AEFV |
|
Aedes galloisi flavivirus |
AB639347 |
AGFV |
|
Flawiwirus Anopheles |
KX148546 |
AnFV |
|
Calbertado virus |
EU569288 |
CLBOV |
|
wirus czynnika spajającego komórki |
M91671 |
CFAV |
|
Cuacua virus |
KX245154 |
CuCuV |
|
Culex flavivirus |
GQ165808 |
CXFV |
|
Culex theileri flawiwirus |
HE574574 |
CXthFV |
|
Culiseta flavivirus |
KT599442 |
CsFV |
|
Wirus Ekwadoru Paraiso Escondido |
KJ152564 |
EPEV |
|
Wirus Hanko |
JQ268258 |
HaFV |
|
Kamiti River virus |
AY149905 |
KRV |
|
Mercadeo virus |
KP688058 |
MECDV |
|
flawiwirus komara |
KC464457 |
MoFV |
|
Nakiwogo wirus |
GQ165809 |
NAKV |
|
Wirus Nienokoue |
JQ957875 |
NiFV |
|
Wirus Palm Creek |
KC505248 |
PCFV |
|
Wirus rzeki Parramatta |
KT192549 |
PaRV |
|
Quảng Bình virus |
FJ644291 |
QBV |
|
Xishuangbanna aedes flavivirus |
KU201526 |
XFV |
|
Flawiwirus Yamadai |
AB981186 |
YDFV |
|
Wirusy bez znanego wektora stawonogów |
|||
Wirus Barkedji wirus |
KC496020 |
BJV |
|
Wirus Cháoyáng |
FJ883471 |
CHAOV |
|
Wirus Donggang |
JQ086551 |
DONV |
|
Ilomantsi virus |
KC692067 |
ILOV |
|
Wirus Kampung Karu |
KY320648 |
KPKV |
|
Wirus Lammi |
FJ606789 |
LAMV |
|
La Tina virus |
KY320649 |
LTNV |
|
Long Pine Key wirus |
KY290256 |
LPKV |
|
Wirus komaraarisma |
MF139576 |
MMV |
|
Wirus komara Nanay |
MF139575 |
NANV |
|
Wirus Ngoye |
DQ400858 |
NGOV |
|
Wirus Nhumirim |
KJ210048 |
NHUV |
|
wirusounané |
EU159426 |
NOUV |
|
Tamana nietoperzy |
AF285080 |
TABV |
|
Segmented flavi- like viruses |
Segmented flavi- like viruseslike viruses |
||
Jingmen tick virus |
KJ001579; |
JMTV |
|
Wirus kleszcza Mogiana |
JX390986; |
MGTV |
|
Wirus Alongshan |
MH158415; |
ASV |
|
Guaico Culex virus |
KM461666; |
GCXV |
|
Shuangao insect virus 7 |
KR902717; |
SAIV7 |
|
Wuhan flea virus |
KR902713; |
WHFV |
|
Wuhan aphid virus 1 |
KR902721; |
WHAV1 |
|
Wuhan aphid virus 2 |
KR902725; |
WHAV2 |
|
Wuhan cricket virus |
KR902709; |
WHCV |