Animal Receipt and Maintenance

Do badań przedstawiono dwadzieścia myszy (dziesięć samców i dziesięć samic), szczep zidentyfikowany jako linia FVB (FVB/NTac), wiek 7 tygodni. Myszy otrzymano w RBU 3, Taconic Biotechnology, Albany NY i aklimatyzowano przez trzy dni na napromieniowanej diecie gryzoni NIH #31M i sterylizowanej wodzie ad lib, sterylnej ściółce kontaktowej (papierowy wiór) i cyklu 12:12 światło:ciemność. W tym okresie wszystkie zwierzęta wyglądały normalnie, a rutynowy nadzór zdrowotny tej kolonii nie wykrył żadnych patogenów mikrobiologicznych. Myszy otrzymały unikalne numery identyfikacyjne (samce 1-10, samice 11-20).

Analiza moczu

Wszystkie myszy poszczono w klatkach metabolicznych i przez noc pobierano próbkę moczu. Analizę moczu przeprowadzono przy użyciu aparatu Multistix 10 SG (Bayer). Paski odczytywano i zapisywano zgodnie z instrukcjami producenta, a wyniki przedstawiono w Tabeli 1. Mysz #19 oddała wyjątkowo dużą ilość moczu (15ml). Mysz ta była wyraźnie większa niż pozostałe samice, ale nie odnotowano żadnych nieprawidłowości.

Chemia kliniczna i hematologia

Końcowa próbka krwi została pobrana od myszy znieczulonych dwutlenkiem węgla poprzez nakłucie serca. Pobrana krew została podzielona na dwie próbki. Jedna próbka została potraktowana EDTA i przechowywana w temperaturze 4°C do oceny hematologicznej. Drugą próbkę pozostawiono do skrzepnięcia w temperaturze 4°C przez 30 minut, a następnie odwirowywano przy 7000rpm przez 10 minut, a surowicę zdekantowano i zamrożono w temperaturze -80°C do analizy chemii klinicznej. Wymaz ze szkiełka został wykonany z jednej kropli krwi pełnej. Zamrożona surowica, schłodzona krew pełna i szkiełka zostały dostarczone do LabCorp (RTP, NC) w celu analizy; wyniki przedstawiono w Tabeli 2. Jeśli nie wskazano inaczej, dane chemiczne surowicy są generowane z automatycznego analizatora Hitachi 717, a dane hematologiczne są generowane z analizatora Celldyne 3500. Liczby różnicowe WBC są wykonywane ręcznie.

Nekropsja i wagi narządów

Wszystkie myszy poddano eutanazji i zarejestrowano masy ciała. Reprezentatywne tkanki zostały zebrane, zważone i utrwalone w 10% Neutralnej Zbuforowanej Formalinie. Tkanki zostały dostarczone do laboratorium Taconic w celu przygotowania i oceny histologicznej. Tabelaryczne zestawienie mas narządów przedstawiono w tabeli 3. Podsumowanie patologa i szczegółowe opisy histologiczne znajdują się poniżej.

Dyskusja

Wszystkie zwierzęta były oszczędne w chwili przybycia i wyglądały klinicznie normalnie. Zachowanie lokomotoryczne było prawidłowe i nie było widocznych zmian lub wydzielin na błonach śluzowych. Wszystkie tkanki wydawały się prawidłowe podczas oceny nekropsji brutto, a wagi mieściły się w granicach normy. Przy pobieraniu tkanek nie zaobserwowano żadnych nietypowych wyników, ani nie zaobserwowano ich w jamach ciała.

Mouse #19 była wyraźnie większa niż pozostałe samice. Organy wewnętrzne również były proporcjonalnie większe. Nie zauważono żadnych innych nieprawidłowości. Ogólny profil tych myszy jest zgodny z oczekiwaniami wobec myszy ogólnego przeznaczenia. Żaden z parametrów nie wskazuje na upośledzenie funkcji systemu.